MM_FS_CNJ_0134 出口肉及肉制品中卡那霉素残留量检验方法

MM_FS_CNJ_0134出口肉 肉制品 卡那霉素 残留量 杯碟法

MM_FS_CNJ_0134

     出口肉及肉制品中卡那霉素残留量检验方法

1.适用范围

    本方法适用于出口禽肉中卡那霉素残留量的检验。

2.原理概要

    用磷酸盐缓冲液抽提试样中残留的卡那霉素，经均质、离心，取上清液进行杯碟法测定。利用被测定样液中的残留卡那霉素与枯草杆菌的作用，产生抑菌圈，从抑菌圈大小用标准曲线法进行定量测定。

3.主要试剂和仪器

3.1.主要试剂

    卡那霉素标准品：775μg/mg，由中国药品生物制品检定所提供；

    缓冲液Ⅰ(pH6.0±0.1)：称取3.5g无水磷酸二氢钾及16.73g无水磷酸氢二钾溶于水中，定容1000mL，121℃高压灭菌15min；

    缓冲液Ⅱ(pH8.0±0.1)：称取13.3g无水磷酸二氢钾及6.2g氢氧化钾溶于水中，定容1000mL，121℃高压灭菌15min；

    缓冲液Ⅲ(pH7.9±0.1)：称取0.523g无水磷酸二氢钾及16.73g无水磷酸氢二钾溶于水中，定容1000mL，121℃高压灭菌15min；

    试验菌种：枯草芽孢杆菌(Bacillussubtilis)，由中国药品生物制品检定所提供，菌株号63501；

    生理盐水：称取8.5g氯化钠，溶解于1000mL水中，121℃高压灭菌15min；

    卡那霉素标准储备液：准确称取适量的卡那霉素标准品，精确到±0.1mg，用缓冲液Ⅰ溶解并定容至1000μg/mL，置4℃冰箱保存，可使用一个月；

    卡那霉素标准工作液：吸取一定量卡那霉素标准储备液，用缓冲液Ⅱ稀释成0.25、0.5、1.0、2.0μg/mL的标准工作液。以上溶液均须当日配制和使用；

    培养基

保存及增菌用培养基(见附录A中A1)。

基层及菌种用培养基(见附录A中A2)。

3.2.仪器

    培养皿：内径90mm，底部平整光滑的玻璃皿或塑料皿，具陶瓦盖；

    牛津杯：不锈钢管，外径(8.0±0.1)mm，内径(6.0±0.1)mm，高度(10.0±0.1)mm；

    游标卡尺：测量范围0～200mm，精度0.02mm；

    绞碎机：电动；

    均质器：不低于10000r/min；

    离心机：不低于4000r/min；

    恒温培养箱：(36±1)℃，搁板应保持水平；

    高压灭菌器；

    恒温水浴锅；

    其他：实验室常用玻璃器皿。

4.试样的抽取与制备

4.1.检验批

    以不超过2500件为一检验批。

    同一检验批的商品应具有相同的特征，如包装、标记、产地、规格和等级等。

4.2.抽样数量

4.3.抽样方法

    按规定的抽样件数随机抽取，逐件开启。每件至少取一袋作为原始样品，抽取的原始样品总量不少于2kg，放入清洁容器内，加封后，标明标记及时送交实验室。

如每件中无小包装或有小包装但每袋重量超过2kg者，则可用灭菌刀具在抽出的包件中，每件割取不少于100g样品，混合后置清洁容器内，作为混合原始样。混合原始样的总量不少于2kg。加封后，标明标记，及时送交实验室。

4.4.试样制备

    从取回的原始样品中取出部分有代表性样品，将可食部分放入绞碎机中绞碎，充分混匀。用四分法缩分出不少于500g作为试样。装入清洁容器内，加封后标明标记。

4.5.试样保存

    将试样于－18℃以下冷冻保存。

注：在抽样及制样的操作过程中，必须防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。

5.过程简述

5.1.样液制备

    称取20.0g试样于均质杯内，加入20mL缓冲液Ⅲ，搅匀，放置60min，均质2min(10000r/min)后，移入离心管中离心30min(4000r/min)。取上清液检查pH，必要时用1mol/L氢氧化钠溶液调节pH至7.9±0.1，此溶液作为样液。

5.2.芽胞悬液的制备

    取适量生理盐水加入已培养好的枯草杆菌63501试管斜面中，制成悬液。取1mL悬液涂布于装有增菌用培养基(见附录A中A1)的克氏瓶中，置培养箱(36±1)℃培养7天。镜检芽孢数达85%以上，用适量生理盐水洗下菌苔，置于(65±1)℃恒温水浴中加热30min，经离心(3000r/min)20min，弃去上清液。再加生理盐水洗涤，经离心后弃去上清液，如此重复洗涤芽孢悬液三次。置常温24h后再置于(65±1)℃恒温水浴中加热30min，然后用适量生理盐水制成芽孢悬液。置4℃冰箱中可保存数月。

5.3.芽胞悬液用量的确定

    在实际测定前，应先用0.25μg/mL卡那霉素标准工作液对加有不同量的芽胞悬液的平板进行预测试，经培养后能使0.25μg/mL标准工作液产生直径≥10mm清晰、完整的抑菌圈的最佳芽胞悬液用量。

5.4.检定用平板

    注入10mL基层培养基(见附录A中A2)于灭菌培养皿内，水平静置，使其凝固。将基层培养基(见附录A中A2)熔化，冷却至50℃左右，加入适量(从5.3测得)的芽胞悬液使之充分混合后，取约7mL注入已铺有基层培养基的平板中，保持水平，使其凝固。所用平板须当天制备。

5.5.标准曲线的制备

    用卡那霉素标准工作液制备标准曲线，以0.5μg/mL浓度的标准工作液为参考浓度。每个标准工作液浓度取三个检定平板作为一组，每个平板上置4个牛津杯，使牛津杯在半径为2.8cm的圆面成90°角间距，对角两个杯加0.5μg/mL参考浓度标准工作液，另两个对角杯加其他浓度的一种标准工作液。4个浓度标准工作液共12个检定平板，用于制备标准曲线。其中0.5μg/mL参考浓度的标准工作液将得到24个数值，而其他标准工作液分别得到6个数值。

    将瓦盖盖好，置(36±1)℃培养(17±1)h。经培养后，翻转平板，除去牛津杯，精确地测量各个浓度的抑菌圈直径(精确到0.1mm)，求得各自的平均值，再求出0.5    μg/mL参考浓度24个抑菌圈直径的平均值。用参考浓度的抑菌圈直径的总平均值减去每组平板参考浓度的抑菌圈直径平均值的差，即为各该组平板的校正值。将校正后的值用式(1)和式(2)算出L和H点的直径，在半对数坐标纸上，以抑菌圈直径为横坐标(算术级)，卡那霉素浓度为纵坐标(对数级)，通过L和H点连一直线即为标准曲线。

L＝(7a＋4b＋c－2d)/10 ………………………………(1)

H＝(7d＋4c＋b－2a)/10 ………………………………(2)

式中：L——标准曲线上最低浓度抑菌圈的直径；

H——标准曲线上最高浓度抑菌圈的直径；

b——参考浓度0.5 μg/mL的24个抑菌圈直径的平均值，mm；

a，c，d——分别表示标准曲线中其他标准浓度(0.25、1.0、2.0μg/mL)的抑菌圈直径经校正后的平均值，mm。

5.6.样液的测定

    每份样液取3个检定平板，在每个平板上置4个已灭菌的牛津杯(按制备标准曲线方法放置)，在对角的2只牛津杯里注满试验样液，在剩余的2只牛津杯里分别注满卡那霉素标准工作液(高稀释度0.25μg/mL及参考浓度0.5μg/mL)。于(36±1)℃下培养(17±1)h，然后翻转平板，除去牛津杯。如有抑菌圈产生，准确量取抑菌圈直径(精确到0.1mm)。

6.结果的计算

    如样液抑菌圈的直径＜10mm，即报告为“阴性”。

    如样液抑菌圈的直径≥10mm，求出每组三个检定平板上样液和参考浓度标准工作液抑菌圈直径的平均值，经校正后，从标准曲线上查出相应的卡那霉素的浓度，通过式(3)，计算试样中卡那霉素残留量：

式中：X——试样中卡那霉素残留的含量，mg/kg；

c——从标准曲线上查出样液中卡那霉素浓度，μg/mL；

m——每毫升最终样液所代表的试样量，g。

注：如测定结果呈阳性，即所显抑菌圈直径的平均值≥10mm时，必要时，尚需进行确证试验(可用薄层色谱法)，以证明抑菌物确系卡那霉素。

7..低限和回收率的测定

7.1.测定低限

    本方法的测定低限为0.5mg/kg。

7.2.回收率

回收率实验数据：

卡那霉素添加浓度在0.5μg/g时，回收率为83.7%；

卡那霉素添加浓度在1.0μg/g时，回收率为91.5%；

卡那霉素添加浓度在2.0μg/g时，回收率为97.0%。

8.来源：

    SN 0536—1996